miércoles, 23 de septiembre de 2020

Tomate de árbol

 

Evaluación de segregantes provenientes del híbrido simple de tomate de árbol (Solanum unilobum x Solanum betaceum) para resistencia a (Colletotrichum acuatum).

R. P. Espín-Anago1, E. P. González-Velozo1, F.B. Lino-Albán1, G. M. Quiroga-Sánchez1, y  C. K. Simbaña Simbo1.

1Universidad Central del Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas, Quito, Ecuador.

Resumen. En los últimos años se han desarrollado programas de mejoramiento realizados por el INIAP, esto con el fin de desarrollar variedades que presenten resistencia a este patógeno. Para esto se realizaron cruces de (Solanum betaceum x Solanum unilobum), la primera con las características ideales para la comercialización y la segunda por presentar resistencia al hongo. Esta progenie tiene 50 % de su constitución genética como el progenitor recurrente. En su forma general, el método consiste en llevar los procesos de retrocruzamiento en cada progenitor donante (V1, V2 y V3) por separado, seleccionando hacia los genes de resistencia de estos y hacia las características agronómicas del progenitor recurrente ( L ). Cuando se considera que ha habido suficiente recuperación, las líneas isogenicas L1 con genes de resistencia de V1; L2 con genes de resistencia de V2 y L3 con genes de resistencia de V3 se mezclan mecánicamente constituyéndose así la variedad multilineal (VML).

Palabras clave ·  Colletotrichum · retrocruzamiento · progenitor · patógeno · isogénica ·

I. INTRODUCCIÓN

El tomate de árbol es uno de los productos de mayor importancia en el Ecuador, ubicándose en los valles interandinos, y en algunas zonas de las provincias orientales, se estima un rendimiento de 60 a 80 toneladas por hectárea (Feicán, Encalada & Becerril, 2016). Por su sabor y características nutricionales podría convertirse en un producto de exportación, sin embargo, esta planta es sensible a varias plagas y enfermedades, lo cual dificulta su producción (Peñafiel, et al., 2009). Uno de los principales problemas son los ocasionados por el hongo (Colletotrichum spp.), causante de la antracnosis. Los daños que ocasiona disminuyen la productividad desde un 60 hasta un 100 % (Pinto, Tiaguaro & Falconí, 2013).

Para el control de este patógeno el control químico, ha sido empelado de manera continua. Sin embargo el uso de fungicidas puede ser contraproducente, tanto por su efecto toxico para el ambiente y por otorgarle resistencia al patógeno (Lobo, Medina, & Cardona, 2000). Aunque existen varios métodos de control, estos no resultan completamente eficaces, por lo que el desarrollo de una variedad resistente a este patógeno se vuelve esencial.

Los estudios realizados de caracterización morfológica y molecular  han identificado a dos géneros causantes de antracnosis en el país los cuales son C. acutatum y C. gloeosporioides (Castro-Quezada et al., 2019). Se han desarrollado programas de mejoramiento, por el INIAP donde realizaron cruces de (Solanum betaceum x Solanum unilobum), la primera con las características ideales para la comercialización y la segunda por presentar resistencia. Las generaciones resultantes presentaban mayor resistencia sin embargo perdían calidad en el fruto, por lo cual se realizaron retrocruzamientos. (Viera et al., 2016). En posteriores estudios se han evaluado las características de los segregantes de [(S. unilobum x S. betaceum) x S. betaceum] x S. betaceum,  para reconocer los materiales promisorios. En los estudios realizados por Perachimba Carlosama, (2018)  se evaluaron 105 plantas de los cuales los segregantes de los grupos GT7, GT10 Y GT15 mostraron mayor resistencia,  por lo que han sido elegidos como materiales para el esquema de mejoramiento, mediante el método multilineal, en la presente investigación.

II. OBJETIVOS.

Objetivo general

Realizar un esquema de mejora genética multilineal mediante retrocruzamiento entre (Solanum betaceum X Solanum unilobum) para la obtención de una variedad tolerante a antracnosis (Colletotrichum acuatum) y fijación de características comerciales.

Objetivos específicos

Determinar el mejor método de fitomejoramiento para obtener resistencia a antracnosis (Colletotrichum acuatum) en el cultivo de tomate de árbol.

Realizar al menos 5 retrocruzas para fijar genes tanto de resistencia como de características comerciales (96.87% genes del recurrente).

Obtener al menos tres grupos de interés con materiales promisorios que contengan genes de interés para desarrollo de resistencia vertical a antracnosis.

III. HIPÓTESIS.

Hipótesis nula: Utilizando estos cruzamientos no se mejorará la variabilidad genética para resistencia a antracnosis en la F1.

Hipótesis alternativa: Utilizando estos cruzamientos se mejorará la variabilidad genética para resistencia a antracnosis en la F1.

IV. MARCO TEÓRICO

Generalidades

Es un árbol pequeño de 2-6 m de altura con hojas cordadas y apiculadas con nervaduras amarillentas en el haz. Su inflorescencia es cima con flores perfectas, pétalos de color verde amarillento. El fruto es una baya, con tamaño que va desde los 4cm a 5cm de largo y 2cm a 3cm de ancho y con colores amarillo o naranja con rayas longitudinales verde oscuro o púrpura. Semillas con forma lenticular de color marrón claro con tamaño 3,5 a 4 mm de largo y 3 a 4 mm de ancho, recubiertas con un mucilago de color naranja (Tamba, 2014).

Distribución del tomate en el ecuador        

El tomate de árbol (Solanum betaceum) es originaria de Sudamérica, en el Ecuador se encuentran en las provincias de Imbabura, Pichincha y Tungurahua, consideradas como zonas de mayor producción, están situadas a una altura de 1.200 a 3100 msnm (Ramírez, Grijalva, Navarrete, & Guerrero, 2015).  En total en el país se cultivan 1478 hectáreas (Lucas Uquillas, Maggi Tenorio, & Yagual Chang, 2010).

El primer caso reportado de antracnosis en tomate de árbol  se dio en el altiplano ecuatoriano, donde los aislamientos provenientes de las provincias de Imbabura, Cotopaxi, Tungurahua, Chimborazo, Bolívar, Loja y Azuay presentaban un 75%  de C.acutatum y el 25% proveniente de la provincia de Pichincha presentaron un grupo nuevo de Collectotrichum no descrito (Perachimba Carlosama, 2018).

Antracnosis

La antracnosis en el tomate de árbol (Solanum betaceum) es conocida como “ojo de pollo”, se produce por un hongo del género Colletotrichum spp. Es la principal enfermedad que causa máximas pérdidas (Fernández & Matute, 2010). Según estudios realizados sobre las características moleculares que presenta Colletotrichum spp., mediante secuencias ITS1-ITS4, se obtuvo como resultados que C. acutatum es el causante de la antracnosis en tomate de árbol en el Ecuador (Pinto, Tiaguaro, & Falconí, 2013).

Infección del patógeno

La infección empieza cuando el inóculo llega al hospedero por el viento y favorecido por la humedad relativa, generalmente las esporas se adhieren a la superficie vegetal y germinan en un período de 12 a 24 horas, se genera el tubo germinal, el cual crece una corta distancia antes de formar el apresorio terminal, y este penetra la cutícula directamente, constituyendo las hifas infectivas que colonizan intracelularmente (Tamba, 2014).

Solanum unilobum como fuente de resistencia

Según Lobo te al. (2000), esta especie presenta resistencia a antracnosis en comparación con las especies de S. Betaceum y S. Materna, por lo que tiene alta probabilidad de que existan genes de resistencia hacia antracnosis. Esto permite enriquecer la variabilidad de las poblaciones de tomate de árbol por el medio de hibridación, ya que la mayor parte de las tazas de Solanum exhiben auto compatibilidad para formación de semillas que sean viables con hibridación interespecífica.

Clima: Se adapta en zonas templadas a templadas frías del callejón interandino, con un rango de temperatura al año de 14 a 20 grados C y de 75% a 87% de humedad relativa al año por lo que el clima templado es el mejor para su adaptabilidad y el requerimiento hídrico de precipitación  anual es de 1200 mm (León et al., 2004).

V. Método de mejoramiento

El método de multilíneal fue propuesta por Harlan et al. (1975), con el fin de reunir características de diferentes progenitores en una sola población, sometida a selección natural en la región de adaptación durante varias generaciones.

Para crear líneas individuales que entran en la variedad multilineal, se efectúa cruzamientos entre S. unilobum y S. betaceum para recuperar características agronómicas deseables y conservar los genes de resistencia, esta progenie tiene 50 % de su constitución genética como el progenitor recurrente. Se hace la primera retrocruza RC1 con el progenitor recurrente y se obtiene segregación del locus A de interés; esta progenie resultante tiene 75 % de su constitución genética, debido a la dominancia  los genotipos no son distinguibles fenotípicamente, entonces, se hace una autofecundación a cada planta para poder obtener el genotipo de interés, las que poseen el genotipo deseado, se seleccionan esas plantas y se hace la retrocruza RC2,la progenie resultante tiene 87.5 % de su constitución genética como el progenitor recurrente, se repite el procedimiento hasta aproximadamente RC5, donde se consigue la línea que tiene las características adaptativas y agronómicas del progenitor recurrente, y además el gen de interés. Las líneas a mezclar se obtienen por retrocruzamientos paralelos que deberían ser teóricamente isogénicas. Tres grupos de segregantes (retrocruza con S. betaceum) mismos que fueron agrupados en función de características físicas que constituyen materiales promisorios. En la figura 1 se presenta el esquema de mejoramiento propuesto.


Figura 1. Esquema de mejoramiento por el método multilineal

VI. Evaluación

Para realizar la evaluación en los frutos de 105 plantas segregantes de tomate de árbol, se somete a presión del patógeno para seleccionar las plantas resistentes a antracnosis, utilizando como testigo la variedad gigante anaranjado. Se evalúa los frutos de los segregantes cada 15 días (a cada cosecha). El hongo se aísla de frutos de tomate de árbol infestados con Colletotrichum acuatum, se cultiva en PDA por 7 días a 21 °C. Al momento de la inoculación, se toma 5 frutos de cada segregante, se debe rociar el hongo en la zona ecuatorial del fruto y posteriormente se procede a realizar una herida con alguna herramienta cortopunzante. Los frutos inoculados se colocan en cámara húmeda, a 26 °C y con humedad relativa del 28% con el fin de simular las condiciones idóneas para el patógeno.

Variables a evaluar:

Incidencia: en base a este dato se puede evaluar los daños económicos que produce la enfermedad en el cultivo y es un aspecto útil para establecer la diseminación de la enfermedad. Severidad: según (Sandoval T., 2014) se ha determinado que el grado de asociación entre el porcentaje de frutos infectados y la severidad, resulta en una relación positiva y directa, es decir, a mayor número de frutos infectados por árbol mayor es el porcentaje de infección por fruto. Tamaño de la lesión: según (Sandoval T., 2014) se ha determinado que el coeficiente de correlación entre tamaño de lesión y severidad es altamente significativo, es decir, a mayor tamaño de lesión, mayor severidad.

Análisis molecular de los grupos de interés.

El ADN genómico total se aísla de hojas congeladas utilizando el protocolo descrito por (Dellaporta, Wood, & Hicks, 1983), es conveniente que el tampón de extracción se suplemente con 1% de polyvinilpirrolidona para eliminar polifenoles (Lodhi, Ye, Weeden, & Reisch, 1994). De este modo, El ADN genómico se digiere con dos enzimas de restricción: MseI y EcoRI, se utiliza dos adaptadores diferentes de doble cadena, diseñados para evitar la reconstrucción de estos sitios de restricción, uno para el extremo cohesivo EcoRI y otro para el extremo cohesivo MseI. Los fragmentos de ADN digeridos y ligados se diluyen 5 veces para ser usados como molde en la reacción de pre-amplificación, donde se amplifican solo 1/16 de los fragmentos de restricción generados, a continuación, se realiza la reacción PCR y la amplificación en el termociclador. Al concluir la amplificación selectiva, las muestras se desnaturalizan añadiéndoles un volumen igual de tampón formamida calentándolas durante 3 minutos a 94 ºC, tres microlitros de cada muestra se cargan en geles al 4.5 % de acrilamida/ bisacrilamida (19:1), `para luego exponerlos empleando autoradiografías con el fin de, tras su revelado visualizar los fragmentos de ADN amplificados y separados electroforéticamente.

Materiales promisorios

Siendo: T= número tratamiento (tomate de árbol segregante) gt= grupo de segregante p= número de planta dentro del grupo de segregante. Se selecciona como materiales promisorios para el fitomejoramiento a aquellos que presentan genes de interés.

Gt10p2: Diámetro ecuatorial 0,49 (cm) Diámetro longitudinal 0,42 (cm) Incidencia 36,67 %. Gt10p5: Diámetro ecuatorial 0,43 (cm) Diámetro longitudinal 0,38 (cm) Incidencia 46,67 %. En ambos casos, la incidencia es menor del 50% y los tamaños de lesiones son bajos. Gt7p10): Diámetro ecuatorial 0,79 (cm) Diámetro longitudinal 0,72 (cm) Incidencia 66,67 %.; Gt10p25: Diámetro ecuatorial 0,93 (cm) Diámetro longitudinal 0,92 (cm) Incidencia 80,00 %.; Gt15p11: Diámetro ecuatorial 0,93 (cm) Diámetro longitudinal 0,94 (cm) Incidencia 80,00 %. En esto casos, a pesar de que son valores que superan el 50% de incidencia, los valores de tamaños de lesión no son muy altos.

Propagación in vitro (cultivo de meristemas)

Para conservar las características deseadas en la fase final de mejoramiento, se empleara la propagación clonal por cultivo in vitro. Este método evita la contaminación con patógenos además se obtiene una gran cantidad de individuos en espacios reducidos, de manera uniforme. El cultivo de meristemas debido a que estas células tienen capacidad de división y se caracterizan por mantenerse siempre jóvenes y poco diferenciadas (Lozada, 2010).

Conclusiones

Se determinó un mejoramiento genético en base a los segregantes provenientes del híbrido simple de tomate de árbol (Solanum unilobum Cav.) destinado a la resistencia a Antacnosis (Colletotrichum) con ayuda de los conocimientos impartidos por el docente de catedra y el reforzamiento del mismo a través de la literatura.

Se realizaron 5 retrocruzas donde la RC5 se obtuvo la línea que tiene las características adaptativas y agronómicas (96.87 % de genes del recurrente) del progenitor recurrente, y además el gen de interés.

Se formaron tres grupos de segregantes (retrocruza con S. betaceum), fueron agrupados en función de sus características físicas (gt7p10) el cual presenta una característica de incidencia antracnosis que va desde 66,67% los segregantes gt10p2 y el gt10p5 con incidencias de 36,67% y 46,67% respectivamente el segregante gt10p25 y el segregante gt15p11-2, presentan una respuesta de baja susceptibilidad a la enfermedad de antracnosis, por lo cual constituye materiales promisorios.

La propagación de tomate de árbol se dificulta por la alta variabilidad de los segregantes, por lo cual se propone realizar la propagación in vitro ya que con esto se mantiene las características deseadas, aunque esto significa un aumento en los costos por instalaciones y por la contratación de personal calificado, este trabajo es necesario para el desarrollo del sector

 

·                    REFERENCIAS

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Lenteja

 Obtención de mutantes de lenteja variedad (INIAP 406), con resistencia a Ascochyta lentis.

Bajaña Samanta1, Cuasapás Steven2, Espinoza Alexande32, Ochoa Jazmín4, Tupiza Pamela5

Abstract. The cultivation of lentils is very important in the daily diet of human beings, for this reason the importance of obtaining a variety of lentils that is resistant to the different phytosanitary problems that has been causing many economic and quality losses at the time of production. That is why this research has been based on the La Esperanza parish sector, Pedro Moncayo canton, due to the increase in losses from lentil cultivation. Based on investigations with gamma rays in other crops that have had good results in obtaining mutants with better resistance characteristics and maintaining the characteristics of the variety used, the mutagenic irradiation technique in lentil with the application of cobalt-60 a allowed to obtain in phase three after micropropagating the buds of the INIAP 406 variety, obtaining a good quantity of buds resistant to Ascochyta (498) that will be released after field trials for organic agricultural production.

KEYWORDS: MUTANTS, IRRADIATION, RELEASE, MICROPROPAGATION, VARIABILITY

1.Introducción

La lenteja es una especie diploide (2n=2x=14) se reproduce por autofecundación, el consumo de esta leguminosa aumenta cada vez más en el mundo, contiene vitaminas B1, B2, minerales, ácido fólico. Los países que lideran la producción de lenteja son Siria, Turquía (Wang et al., 2009).

En el Ecuador la superficie de siembra de lenteja ha disminuido en un 45% en los últimos años, este cultivo está en manos de agricultores de toda la sierra ecuatoriana quienes utilizan de forma restringida la tecnología por falta de recursos y carencia de esta dentro del país (Hansen, 1997). La producción es destinada a la comercialización interna, sin embargo, la oferta siempre supera la demanda (Lalama, 1994).

El problema fitosanitario más importante es la mancha parda causada por el hongo Ascochyta lentis que puede causar pérdidas del 28 – 100 % según la variedad de lenteja sembrada y el estado de infección. Causa síntomas en hojas, vainas, tallos provocando marchitamiento de la planta (Supúlveda et al., 1982). Produce disminución de la producción y pérdida del valor comercial. La ascoquitosis puede controlarse con fungicidas, pero se considera que es más eficiente y sostenible la utilización de variedades resistentes (Davidson & Kimber, 2007).

La utilización de mutaciones inducidas altera o divide los cromosomas generando variabilidad genética (Gonzales, 2004).

Esta técnica para inducir mutaciones mediante irradiación ya ha sido desarrollada en otros cultivos de interés agrícola, es así que en Argentina los programas de fitomejoramiento han desarrollado mutantes como el maní “Colorado irradiado INTA” con mayor contenido de grasa y alto rendimiento además del limón “Eureka 22-INTA” con mayor calidad del fruto y alto rendimiento. La técnica de mutación inducida disminuye la brecha en los procesos de selección por lo que se la usa como un complemento a los programas de mejoramiento tradicionales (Salcedo, 2010). 
Han realizado estudios en Bangladesh en el cultivo de lenteja usando la técnica de mutagénesis inducida con rayos gamma, irradiaron semillas y obtuvieron plantas erectas de mayor tamaño, mayor rendimiento y precocidad. Otros investigadores en Bulgaria emplearon la técnica de mutagénesis con rayos gamma y obtuvieron una variedad de lenteja mutante denominada Elitsa con mayor rendimiento y resistencia a enfermedades con la finalidad de disminuir las aplicaciones y reducir el potencial riesgo a resistencias por agroquímicos (IAEA,2001).

1.1.            Problema de estudio

¿Pocas variedades de lenteja que tengan resistencia a Ascochyta, sumado a esto el manejo inadecuado de agroquímicos por parte de los agricultores?

En la provincia de Pichincha, cantón Pedro Moncayo, parroquia la Esperanza no se dispone de variedades mejoradas de lenteja pues únicamente se cultivan materiales tradicionales como la variedad Putsa ya sea para el mercado o autoconsumo, pero esta variedad es susceptible a enfermedades y de bajo rendimiento debido a su constitución genética. Los costos de producción se maximizan al realizar aplicaciones constantes por lo que al utilizar una variedad mejorada resistente a enfermedades se podría minimizar los costos de producción y reducir las aplicaciones de agroquímicos (Peralta, Murillo, Caicedo, Pinzón & Ribera 2014).      
Es importante brindar una nueva variedad de lenteja que tenga mayor resistencia a enfermedades que las variedades tradicionales, así mismo de mejor calidad comercial y que cumplan con los requerimientos del mercado para los agricultores de la parroquia la Esperanza.

1.2.        Objetivos

1.2.1.    Objetivo General

Obtener una variedad de lenteja (Lens esculenta L.), que presente características de resistencia vertical al ataque de los hongos del “Complejo Ascochyta" mediante el uso de la técnica de inducción de mutaciones.

1.2.2.    Objetivos específicos

·         Investigar los cambios que producen los rayos gamma en la F1 para la generación de mutaciones en la planta de lenteja.
·         Demostrar que se puede lograr obtener variabilidad genética en lenteja con la aplicación de rayos gamma que presenten buenas características para el mercado.
·         Analizar si la inducción de mutaciones es una técnica adecuada para lenteja que permita obtener poblaciones con características de resistencia a Ascochyta lentis.

1.3.            Hipótesis

1.3.1.      Hipótesis nula (H0)

La lenteja es inducida a mutagénesis pero no se desarrolla resistencia a Ascochyta lentis.

              1.3.2.       Hipótesis alternativa (H1)

La lenteja es inducida a mutagénesis y como consecuencia desarrolla resistencia ante Ascochyta lentis.

2.Resultados

2.1.            Características de la variedad

La lenteja de la variedad INIAP 406, es una leguminosa con características de hábito de crecimiento semi erecto, precoz, tamaño de grano mediano puede alcanzar una altura de hasta 35cm. Principal enfermedad que afecta al cultivo.

Ascochyta lentis pertenece al reino Fungi, Hongos Mitosporicos (Division Eumycota, Subdivision Deuteromycotina, Clase Coelomycetes). Causa lesiones foliares grisáceas con un halo de color marrón castaño. Estas lesiones, que comienzan por el margen se van extendiendo hacia las venas y de ahí a tallos y vainas, hasta llegar a las semillas, que aparecen cubiertas de manchas circulares de color oscuro (Diaz & Tello, 1995).

2.2.            Bases genéticas de la resistencia

La resistencia tradicionalmente ha sido agrupada en dos categorías: Resistencia vertical o cualitativa esta se controla por uno o algunos genes frente a determinadas razas del patógeno, es muy común contra hongos se controla la interacción entre patógeno y planta. La resistencia horizontal es efectiva contra todas las razas, pero no inhibe la interacción patógena y planta solo disminuye el tamaño de las lesiones por lo tanto todos sus efectos son parciales (Jaramillo & Rojas,1977).

2.3.            Manejo genético

El fitomejoramiento constituye una herramienta importante para el manejo de Ascochyta lentis, los programas de mejoramiento tradicionales han realizado cruces entre especies para generar variabilidad genética por lo tanto el uso de métodos clásicos y otros métodos más recientes de manipulación genética contribuye al mejoramiento de los cultivos estos métodos actuales se basan en el ADN recombinante y la utilización de radiaciones ionizantes gamma (Camadro, 2000).

2.4.            Mejoramiento genético por efecto de radiación gamma

Es una técnica que requiere el uso de variedades comerciales o de un material vegetal que se requiera crear variabilidad genética, con los agentes mutagénicos actualmente disponibles y los miles de genes expuestos al mutágeno existe la posibilidad de que se produzca mutaciones inducidas (Donini & Mannino, 1990).

La variabilidad que se genera producto de las mutaciones inducidas no es diferente que las mutaciones espontáneas, más bien se considera una herramienta importante cuando se desea mejorar uno o dos caracteres de una planta con características comerciales (Suárez, 2006).
Para López et. al., (2014), los agentes de mutaciones artificiales o inducidas son llamados mutágenos y se pueden agrupar en dos categorías: mutágenos físicos y mutágenos químicos, los cuales son utilizados para la generación de variabilidad y son capaces de alterar o cambiar la información genética de un organismo.
Una planta superior puede tener hasta 100.000 genes en una célula, aunque no es frecuente observar mutaciones en un gen en particular, lo manifestado significa que cada planta puede transmitir a la próxima generación una o más mutaciones espontáneas. Sin embargo, los científicos tienen que recurrir a la inducción de mutaciones ya que la variación genética parece ser bastante limitada y otro lado generalmente resulta difícil determinar mutaciones de genes sin expresiones fenotípicas (visibles). No se conoce otra alternativa de alterar los genes, salvo esperar con paciencia que se produzcan mutaciones espontáneas (Novak & Brunner, 1992).

2.5.            Esquema de mejoramiento por mutagénesis inducida con una fuente de cobalto 60

El esquema de mejoramiento genético consta de tres fases, en la fase uno se irradia las yemas apicales de 50 días de edad provenientes de plantas de lenteja INIAP 406 a 35 Gy con esta dosis se garantiza que los cambios sean permanentes a nivel del código genético, en la fase dos se realiza la micropropagación de los explantes irradiados con radiación Gamma en la fuente de cobalto 60 y se selecciona los mutantes sólidos. En la tercera fase se evalúa la resistencia de los mutantes a Ascochyta lentis.

2.5.1.      Fase uno y dos

Se realiza la irradiación mutagénica de 500 yemas apicales a 35 Gy y todo el proceso de micropropagación de las yemas, con un testigo correspondiente al 5 % del total de yemas irradiadas. A los 45 días se obtiene la primera generación mutante MV0 = 460 yemas que sobrevivieron, las cuales se micropropagó a 1392 yemas en MS, de la MV1= 653 se micropropagó a 1959 yemas, la MV2= 1034 se hizo la tercera micropropagación a 3102 yemas.

De la población mutante final MV3 (estable)= 1753 yemas se seleccionan por plantas con deformaciones en hojas, tallos, plantas con características similares al testigo, o por plantas que conservan sus características, altura de la planta, número de nudos, distancia entre nudos de esta manera se obtiene 1319 mutantes sólidos y 434 mutantes deformes.

2.5.2.      Fase tres

La evaluación de la resistencia de los mutantes sólidos a Ascochyta lentis se realiza en la generación mutante MV3, se requiere de un testigo que es el 5% de la población de mutantes sólidos seleccionados. Ascochyta lentis se inocula en plantas de lenteja y a los seis días se verifica los resultados. Se utilizará una escala empleada por Timmerman-Vaughan et al (2002) para medir la severidad del ataque de los hongos del complejo Ascochyta se considera como resistente a las plantas MV3 que se encuentren en un valor hasta de 3 dentro de la escala, de las 1319 inoculadas con el hongo Ascochyta 498 plantas fueron incompatibles (resistentes) con el hongo y 821 fueron compatibles con el hongo.

2.5.3.      Prueba de progenie

Luego de la obtención de las plantas seleccionadas con resistencia a la enfermedad, se designó el establecimiento del ensayo de progenie de los mutantes sólidos de lenteja. La semilla utilizada procede de las plantas mutantes obtenidas en F3, luego de los tratamientos radiactivos de Co60, para determinar que el gen de resistencia se mantiene en las siguientes generaciones.

El ensayo se realizó en invernadero, los factores ambientales del lugar se deben adecuar para que coincidan en lo posible con los requerimientos de Lens esculenta. El diseño experimental consistió en bloques incompletos al azar, cuyo objeto es reducir al mínimo la heterogeneidad ambiental. Al realizar la distribución de la planta en este diseño se utilizó una tabla de números aleatorios para determinar su ubicación.
Pasados 30 días de la siembra, se procede a la inoculación a las plantas con Ascochyta lentis, luego de una semana de espera, se realizan las primeras evaluaciones en las plantas y determinar si tuvo lugar la infección en las plantas.

2.6.            Características de selección


•              Porcentaje de sobrevivencia 
•              Altura de planta
•              Longitud de la raíz
•              Crecimiento en roseta
•              Necrosamiento del follaje
•              Deformaciones en hojas, tallos
•              Distancia entre nudos

3. Esquema de fito mejoramiento en lenteja, para la obtención 



4. Referencias bibliográficas

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2.     Anexo: Árbol de problemas





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